Un peptide lyophilisé doit être dissous avant de pouvoir être utilisé. La quantité d’eau employée relève de votre choix, mais ce choix détermine la concentration de la solution. Or c’est de cette concentration dont vous avez besoin pour mesurer avec précision. Heureusement, le calcul est simple.
La formule
La concentration correspond à la quantité de peptide divisée par la quantité de liquide:
concentration (mg/ml) = peptide dans le flacon (mg) ÷ eau ajoutée (ml)
Un flacon de 10 mg auquel vous ajoutez 2 ml d’eau donne donc une solution à 5 mg/ml. Comme 1 mg équivaut à 1 000 microgrammes (mcg), cela correspond aussi à 5 000 mcg/ml, soit 500 mcg pour 0,1 ml.
Tableau de calcul
La concentration en mg/ml pour les combinaisons courantes:
| Peptide dans le flacon | 1 ml d’eau | 2 ml d’eau | 3 ml d’eau |
|---|---|---|---|
| 5 mg | 5 mg/ml | 2,5 mg/ml | 1,67 mg/ml |
| 10 mg | 10 mg/ml | 5 mg/ml | 3,33 mg/ml |
| 15 mg | 15 mg/ml | 7,5 mg/ml | 5 mg/ml |
| 20 mg | 20 mg/ml | 10 mg/ml | 6,67 mg/ml |
| 30 mg | 30 mg/ml | 15 mg/ml | 10 mg/ml |
Quelle quantité d’eau choisir?
Il n’y a pas de règle fixe; tout dépend de la précision avec laquelle vous devez mesurer. Deux règles empiriques:
- Plus d’eau donne une concentration plus faible. Chaque volume de liquide prélevé contient alors moins de peptide. Il est ainsi plus facile de mesurer de petites quantités avec précision.
- Moins d’eau donne une concentration plus élevée. C’est pratique si vous voulez travailler avec de petits volumes, mais une petite erreur de lecture pèse alors plus lourd.
Choisissez une quantité qui facilite le calcul. Avec 1, 2 ou 5 ml, vous obtenez des chiffres ronds; avec 3 ml pour un flacon de 10 mg, vous obtenez 3,33 mg/ml, ce qui est moins commode à mesurer. Notez toujours sur le flacon la quantité d’eau ajoutée et la date.
Pourquoi de l’eau bactériostatique?
L’eau bactériostatique est de l’eau stérile contenant 0,9% d’alcool benzylique. Cet alcool benzylique freine la croissance des bactéries. Vous pouvez ainsi ponctionner un flacon plusieurs fois sans que la solution ne se contamine rapidement. L’eau stérile ordinaire n’offre pas cette protection et est donc destinée à un usage unique.
Chez PepPure, 3 ml d’eau bactériostatique sont offerts avec chaque peptide de votre commande. Des flacons plus grands, de 10 ou 30 ml, peuvent être commandés séparément.
Comment dissoudre le peptide
- Laissez le flacon revenir à température ambiante et désinfectez le bouchon en caoutchouc avec une lingette imbibée d’alcool.
- Prélevez la quantité d’eau bactériostatique choisie.
- Injectez l’eau lentement le long de la paroi intérieure du flacon, et non directement sur la poudre.
- Faites tourner doucement le flacon jusqu’à dissolution complète de la poudre. Ne secouez pas: cela peut endommager le peptide.
- Vérifiez que la solution est limpide. Avec le GHK-Cu et les mélanges qui en contiennent, une couleur bleue est normale.
Les étapes détaillées et le contexte se trouvent dans Reconstitution: du lyophilisat à la solution.
Conservation après dissolution
Un peptide dissous est moins stable que la poudre sèche. Conservez la solution au réfrigérateur à 2–8 °C, à l’abri de la lumière, et utilisez-la dans les quelques semaines. Ne congelez pas et ne décongelez pas un flacon reconstitué de manière répétée. Pour en savoir plus: Stockage et stabilité des peptides lyophilisés.
Exemple de calcul: les mélanges
Pour un mélange, calculez d’abord la concentration totale, puis la part de chaque peptide. Un flacon de Glow contient 70 mg: 50 mg de GHK-Cu, 10 mg de BPC-157 et 10 mg de TB-500. Avec 3,5 ml d’eau, la concentration totale est de 20 mg/ml. Sur ce total, 5/7 correspondent au GHK-Cu (14,3 mg/ml) et 1/7 respectivement au BPC-157 et au TB-500 (2,9 mg/ml chacun).
Research Use Only. Cet article décrit des manipulations de laboratoire et des calculs. Il ne constitue pas un conseil d’utilisation ou de dosage. Les peptides de PepPure sont exclusivement destinés à la recherche in vitro et à un usage en laboratoire.
